ブラッドフォードとローリーのどちらが敏感ですか?
質問者:Evaldas Hofschulz |最終更新日:2020年5月8日
カテゴリ:健康的な生活栄養
ビウレットアッセイは、5 mg / ml未満のタンパク質濃度にはあまり適していません。 Folin-Ciocalteu試薬を使用して還元銅を検出することにより、 Lowryアッセイはビウレット反応のみの場合よりもほぼ100倍感度が高くなります。ブラッドフォードアッセイは、タンパク質の配列に依存します。
これを考慮すると、なぜブラッドフォードアッセイの感度が高いのですか?歴史的に、BCA法はブラッドフォード法よりも感度が高く、最初の方法はタンパク質-銅キレート化と還元銅の二次検出に基づいているためです。一方、ブラッドフォード法は、タンパク質と色素の結合と465nmから595nmへのカラーシフトに基づいています。
続いて、質問は、タンパク質推定のための最良の方法はどれですか?ローリー法:ローリー法は、Oliver Lowry(1951)によって開発されたタンパク質推定に使用される古い方法の1つです。これは非常に感度が高く、正確な結果が得られます。 2〜5 µgの低濃度のタンパク質を検出します。
また、どのタンパク質アッセイが最も感度が高いかを尋ねる人もいるかもしれません。
BCAアッセイには多くの利点があります。他の方法と比較して、BCAアッセイは最も感度の高いものの1つです(5 ug / mLという低い濃度のタンパク質を検出できます)。他のものよりもばらつきが少なく(ブラッドフォードアッセイなど)、広範囲のタンパク質濃度の測定に使用できます。
なぜBSAは良い基準なのですか?
BSAは、アッセイでシグナルを増加させる安定性、多くの生化学反応での効果の欠如、および牛産業の副産物であるウシ血液から大量に容易に精製できるため低コストであるために使用されます。
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ブラッドフォード試薬が青色に変わるのはなぜですか?
タンパク質のブラッドフォードアッセイは、その感度、速度、利便性、UV対応分光光度計の必要性の欠如、および96ウェルプレートへの適応性のために広く使用されています。 「ブラッドフォード試薬」は、タンパク質と相互作用すると青色に変わる酸性の染色剤です。
ブラッドフォードアッセイを使用した場合の2つの潜在的な問題は何ですか?
-ブラッドフォードアッセイを持つ2つの潜在的な問題は、アッセイがより大きなタンパク質にのみ有効であり、サンプルは狭い温度およびpH範囲内でなければならないことことです。 3000〜5000ダルトン未満のタンパク質を含むサンプルは、吸光度が低すぎるため、読み取るのが困難になります。
クマシーブルーは何に結合しますか?
クマシーブルーによるタンパク質ゲルの染色。クマシー色素(R-250およびG-250)は、色素スルホン酸基と正のタンパク質アミン基の間のイオン相互作用、およびファンデルワールス引力を介してタンパク質に結合します。クマシーG-250は、pH2未満でロイコ型を示します。
ブラッドフォード試薬は何色ですか?
タンパク質が結合したときのクマシーG-250の色の赤から青への変化を分光法で測定します。タンパク質が存在しない場合、色素が赤色の場合、ブラッドフォード試薬の最大吸光度(A max )は470nmです。
ブラッドフォードアッセイを妨げるものは何ですか?
アッセイのpHを変更する試薬、または高レベルの界面活性剤を含む試薬は、ブラッドフォードアッセイに干渉します。未知のタンパク質サンプルの吸光度が高すぎます。未知のサンプルと同じバッファーで標準タンパク質サンプルを希釈して、これをテストします。
BSAは何に使用されますか?
ウシ血清アルブミン( BSA )は、タンパク質濃度標準としての機能、細胞栄養素としての機能、制限消化中に酵素を安定化する能力など、さまざまな実験室アプリケーションで使用されます。
ブラッドフォードアッセイは定性的ですか、それとも定量的ですか?
ブラッドフォードタンパク質アッセイは、1976年にマリオンM.ブラッドフォードによって開発されました。これは、溶液中のタンパク質の濃度を測定するために使用される、迅速で正確な分光分析手順です。反応は、測定されたタンパク質のアミノ酸組成に依存します。
なぜタンパク質推定を行うのですか?
タンパク質の定量化は、サンプルまたは製剤化された製品の総タンパク質含有量を理解するために必要です。他の重要なアッセイの範囲では、データを生成するために正確な総タンパク質含有量の結果が必要になるため、正確なタンパク質の定量化は重要です。
タンパク質推定の他の方法は何ですか?
プロセスを簡素化するために、タンパク質を定量化するためのいくつかの信頼できる方法が開発されました。これらの方法には、Warburg-Christian、Lowry Assay 、およびBradford Assayが含まれます(これらはすべて高分子の吸光度特性に依存しています)。ブラッドフォードアッセイ法は、色素を使用してタンパク質に結合します。
ローリー法がより敏感なのはなぜですか?
Folin-Ciocalteu試薬を使用して還元銅を検出することにより、 Lowryアッセイはビウレット反応のみの場合よりもほぼ100倍感度が高くなります。しかし、このアッセイにはエラーがないわけではなく、他の多くの化合物(基本条件および界面活性剤-SDS)による干渉に敏感です。
ローリー法はどのように機能しますか?
ローリータンパク質アッセイでは、アルカリ性条件下でタンパク質のペプチド結合と結合する銅を使用します。これにより一価の銅イオンが形成され、フォリン試薬と反応して青色の物質に還元されます。したがって、タンパク質の濃度を決定することができます。
タンパク質をどのように測定しますか?
タンパク質を直接測定する方法は、280nmでのサンプルの吸光度を測定することです。トリプトファンやチロシンなどの芳香族アミノ酸残基は、280 nmのUV光を吸収し、タンパク質含有量の再計算を可能にします。
タンパク質濃度をどのように定量化しますか?
一般に、標準タンパク質(通常はBSA)の一連の既知の濃度の吸光度を測定し、検量線を作成します。次に、その検量線を使用して、吸光度に基づいてタンパク質サンプルの濃度を計算します。
BCAタンパク質アッセイとは何ですか?
BCAタンパク質アッセイは、サンプル中の総タンパク質の定量に使用されます。この方法の原理は、タンパク質は、アルカリ性溶液(ビウレット反応)中のCu + 1へのCu + 2を削減し、ビシンコニン酸による紫色の形成をもたらすことができることです。
アルカリ銅試薬はどのように作りますか?
アルカリ性銅試薬:0.5mlの硫酸銅、0.5mlの酒石酸カリウムナトリウム、50mlの炭酸ナトリウムを混合して調製。フォリンフェノール試薬-蒸留水で1:1に希釈。 0.1 N NaOH中の標準タンパク質溶液(100 mg%)ウシ血清アルブミン。
サンプル中のタンパク質の量を定量化する4つの方法は何ですか?
タンパク質測定の実用的な側面:
- 精製中のタンパク質の回復を監視します。
- サンプル中のタンパク質の総量を測定します。
- 比色分析。ビウレットアッセイ、ローリーアッセイ、ビスシンコニン酸(BCA)アッセイ、ブラッドフォードアッセイ。
- アミノ酸分析。
- ラジオラベリングおよび他のタグとのラベリング。
タンパク質標準とは何ですか?
タンパク質標準は、SDSページで使用する場合、分子量組成がわかっているタンパク質の集まりであり、特定のタンパク質の分子量(kD)を推定するための参照として使用します。 tldr:タンパク質標準は、参照として使用する既知のMWタンパク質です。